Campo DC | Valor | Idioma |
dc.contributor.advisor | Sá, Maria Fátima Grossi de | - |
dc.contributor.author | Moura, Hudson Fernando Nunes | - |
dc.date.accessioned | 2020-06-24T14:25:10Z | - |
dc.date.available | 2020-06-24T14:25:10Z | - |
dc.date.issued | 2020-06-24 | - |
dc.date.submitted | 2019-12-04 | - |
dc.identifier.citation | MOURA, Hudson Fernando Nunes. Transcritoma de Helicoverpa Armigera (Lepidoptera: noctuidae); interação com hospedeiros e identificação de alvos biotecnológicos p/ o controle. 2019. 109 f., il. Tese (Doutorado em Biologia Molecular)—Universidade de Brasília, Brasília, 2019. | pt_BR |
dc.identifier.uri | https://repositorio.unb.br/handle/10482/38119 | - |
dc.description | Tese (doutorado)—Universidade de Brasília, Instituto de Ciências Biológicas, Departamento de Biologia Celular, Programa de Pós-Graduação em Biologia Molecular, 2019. | pt_BR |
dc.description.abstract | A Helicoverpa armigera é um inseto generalista da ordem Lepidoptera, cuja ocorrência foi
relatada nos anos 2012/2013 no Brasil e vem causando prejuízos à agricultura nacional no que
concerne à viabilidade das culturas e o plantio sucessivo de espécies vegetais hospedeiras
(algodão, feijão, milho e soja) em áreas muito extensas. Dessa forma, discute-se a importância
do conhecimento sobre o ciclo de vida do inseto a fim de buscar métodos sustentáveis de
controle para essa praga. Este trabalho propôs o estudo do transcritoma de Helicoverpa
armigera sob diferentes condições de alimentação do inseto em plantas de tabaco e algodão
visando a geração de dados acerca da biologia molecular deste organismo e a identificação de
genes candidatos que codifiquem moléculas essenciais à sobrevivência do inseto, para uso no
controle deste inseto-praga. Após a montagem, este transcritoma resultou em 53.497 contigs
sendo que 3% dos genes anotados foram diferencialmente expressos para as condições de
alimentação, o que representou um total de 1295 genes. Após as análises de enriquecimento
de ontologia gênica, os genes com expressão mais significativa foram utilizados para a escolha
de genes para a validação por qPCR, com base no valor de fold change, corroborando os
valores de expressão encontrados em RNA-seq. Alguns genes diferencialmente expressos
relacionados com os mecanismos de digestão, detoxificação de substâncias e componentes da
membrana peritrófica do inseto foram validados. Novas análises detalhadas acerca de outros
componentes destas vias são necessárias a fim de propor um modelo que justifique a diferença
nos perfis de expressão para as condições estudadas. No que concerne a atuação de H.
armigera como praga polífaga, vale ressaltar a importância do desenvolvimento de estratégias
sustentáveis de controle, como a abordagem de silenciamento gênico via RNAi. Considerando
a dificuldade de silenciamento de genes em lepidópteros relatada na literatura, principalmente
se o dsRNA for administrado na hemolinfa do inseto, a segunda parte deste trabalho teve como
objetivo avaliar diferentes estratégias para o silenciamento de genes deste inseto. Como gene
alvo, foi utilizado um receptor de neuropeptídeo associado à integração metabólica, o receptordo hormônio adipocinético (AKHr). Foram analisadas as seguintes condições experimentais:
vias de administração de dsRNA oral e tópica; time course de silenciamento em 24, 48 e 72
horas após a ingestão de dsRNA; administração do dsRNA em diferentes doses na sua forma
não encapsulada e encapsulada com a perspectiva de potencializar os efeitos do
silenciamento, amostras de dsRNA para o gene AKHr e proteger a molécula da ação de
possíveis nucleases intestinais. Entretanto, os resultados não demonstraram efeitos
potencializadores no silenciamento gênico, possivelmente em virtude das propriedades
químicas da partícula e do pH intestinal. Além disso, foi avaliada a influência dos efeitos do
silenciamento no peso dos insetos utilizando dsRNA não encapsulado e não houve diferença
significativa entre os grupos tratados com dsRNA e os controles. Desta forma, este trabalho
reitera a necessidade de novas estratégias de silenciamento objetivando fenótipos que
denotem a efetividade do controle biotecnológico desta praga via silenciamento gênico. | pt_BR |
dc.language.iso | Português | pt_BR |
dc.rights | Acesso Aberto | pt_BR |
dc.title | Transcritoma de Helicoverpa Armigera (Lepidoptera: noctuidae); interação com hospedeiros e identificação de alvos biotecnológicos p/ o controle | pt_BR |
dc.type | Tese | pt_BR |
dc.subject.keyword | Helicoverpa armigera | pt_BR |
dc.subject.keyword | Transcritoma | pt_BR |
dc.subject.keyword | Digestão | pt_BR |
dc.subject.keyword | Detoxificação | pt_BR |
dc.subject.keyword | AKHr | pt_BR |
dc.subject.keyword | RNA interferente | pt_BR |
dc.rights.license | A concessão da licença deste item refere-se ao termo de autorização impresso assinado pelo autor com as seguintes condições:Na qualidade de titular dos direitos de autor da publicação, autorizo a Universidade de Brasília e o IBICT a disponibilizar por meio dos sites www.bce.unb.br, www.ibict.br, http://hercules.vtls.com/cgi-bin/ndltd/chameleon?lng=pt&skin=ndltd sem ressarcimento dos direitos autorais, de acordo com a Lei nº 9610/98, o texto integral da obra disponibilizada, conforme permissões assinaladas, para fins de leitura, impressão e/ou download, a título de divulgação da produção científica brasileira, a partir desta data. | pt_BR |
dc.contributor.advisorco | Souza Junior, José Dijair Antonino de | - |
dc.contributor.advisorco | Coelho, Roberta Ramos | - |
dc.description.abstract1 | Helicoverpa armigera is a generalist insect of the order Lepidoptera, whose occurrence was first
reported in 2012/2013 in Brazil. This pest caused damage to national agriculture regarding the
viability of crops and the successive planting of host plant species (cotton, beans, maize and
soy) across large areas. Thus, we discuss the importance of knowledge about the life cycle of
the insect in order to seek sustainable control methods for this pest. This work proposed the
study of Helicoverpa armigera transcriptome under different conditions of insect feeding in
tobacco and cotton plants aiming at the generation of data about the molecular biology of this
organism and the identification of candidate genes that encode molecules essential for insect
survival in controlling this insect pest. After assembly, this transcriptome resulted in 53,497
contigs of which 3% of the annotated genes were differentially expressed for feeding conditions,
representing a total of 1295 genes. After gene ontology enrichment analysis, the genes with the
most significant expression were used to select genes for qPCR validation based on the fold
change value, corroborating the expression values found in RNA-seq. Some differentially
expressed genes related to the mechanisms of digestion, detoxification of substances and
components of the insect's peritrophic membrane were validated. Further detailed analyses of
other components of these pathways are necessary in order to propose a model that justifies
the difference in expression profiles for the studied conditions. Regarding H. armigera's role as
a polyphagous pest, it is worth highlighting the importance of developing sustainable control
strategies, such as through RNAi gene silencing approach. Considering the difficulty of gene
silencing in lepidopterans reported in the literature, especially if dsRNA is administered to the
insect hemolymph, the second part of this study aimed to evaluate different strategies for gene
silencing of this insect. As target gene, a neuropeptide receptor associated with metabolic
integration, the adipokinetic hormone receptor (AKHr) was selected. The following experimental
conditions were analyzed: oral and topical dsRNA administration routes; silencing time course
at 24, 48 and 72 hours after dsRNA ingestion; administration of dsRNA at different doses in itsunencapsulated and encapsulated form with a view to enhancing the effects of silencing,
dsRNA samples for the AKHr gene and protecting the molecule from the action of possible
intestinal nucleases. However, these results showed no potentiating effects on gene silencing,
possibly due to particle chemical properties and intestinal pH. In addition, the influence of
silencing effects on insect weight was evaluated using unencapsulated dsRNA and there was
no significant difference between the dsRNA-treated groups and the controls. Thus, this work
reiterates the need for new silencing strategies aiming at phenotypes that denote the
effectiveness of biotechnological control of this pest via gene silencing. | pt_BR |
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